1、测试生物组织中还原糖、脂肪和蛋白质 材料选择：提取液呈浅色或近无色 1、斐林试剂鉴别还原糖时，溶液的颜色变化为：砖红色(沉淀)。斐林试剂只能检验生物组织中还原糖存在与否，而不可以鉴别非还原性糖。葡萄糖、麦芽糖、果糖是还原糖（等量混和，现配现用，加热砖红色） 2、双缩脲试剂的成分是水平浓度为0.1 g／mL的氢氧化钠溶液（Ａ液）和水平浓度为0.01 g／mL（Ｂ液）的硫酸铜溶液。蛋白质可与双缩脲试剂产生紫色反应。（先Ａ后Ｂ，Ａ多Ｂ少，振荡显紫色） 3、苏丹Ⅲ染液遇脂肪的颜色反应为橘黄色，苏丹Ⅳ染液遇脂肪的颜色反应为红色。 （制片染色洗去浮色盖盖玻片察看） 2、察看植物细胞的质壁离别和复原 实验原理:成熟的植物细胞有一大液泡。当细胞液的浓度小于外面溶液的浓度时（外因），细胞液中的水分就透过原生质层进入到外面溶液中，因为原生质层比细胞壁的伸缩性大（内因），当细胞不断失水时，液泡渐渐缩小，原生质层就会与细胞壁渐渐离别开来，既发生了质壁离别。当细胞液的浓度大于外面溶液的浓度时，外面溶液中的水分就透过原生质层进入到细胞液中，液泡渐渐变大，整个原生质层就会慢慢地恢复成原来的状况，既发生了质壁离别复原。 材料用具 紫色的洋葱鳞片叶；刀片，镊子，滴管，载玻片，盖玻片，吸水纸，显微镜；蔗糖的水平浓度为0.3g/mL的溶液，清水。 办法步骤 1、制作洋葱鳞片叶表皮的临时装片。 2、察看植物细胞的质壁离别与复原现象（低倍镜即可） （1）察看洋葱表皮细胞 （2）察看洋葱表皮细胞的质壁离别（导流的办法） （3）察看洋葱表皮细胞的质壁离别复原 3、探究影响酶活性的原因 温度对酶活性的影响 1、实验原理： 酶的催化用途受温度的影响非常大，一般温度每升高10℃，反应速度加快一倍左右，最后反应速度达到最大值。其次酶的化学本质是蛋白质，温度过高可引起蛋白质变性，致使酶的失活。因此，反应速度达到最大值将来，伴随温度的升高，反应速度反而渐渐降低，以至完全停止反应。反应速度达到最大值时的温度称为某种酶用途的最适温度。 2、办法步骤： ①、取3支试管，编号后各加入淀粉溶液2毫升。 ②、将第l、2号试管放入37℃恒温水浴中保温，第3号试管放入冰水中冷却 ③、5分钟后，向第l号试管中加好友煮沸5一15分钟的稀释唾液l毫升；向第2、3号试管加稀释唾液各l毫升。摇匀， ④、20分钟后取出3支试管，各加碘化钾-碘溶液2滴，混匀，比较各管溶液的颜色。判断淀粉被唾液酶水解的程度，井说明温度对唾液酶活性的影响。 PH对酶活性的影响 1、实验原理 酶催化反应需要适合的PH值，过酸或过碱都能使酶变性失活 2、 实验步骤：①在1～5号试管中分别加入5％的过氧化氢液2mL。 ②加完过氧化氢液后，向各试管中加入相应的缓冲液3．00mL，使各试管中反应液的pH值依次稳定在5．00．6．20．6．80.7．40．8．00。 ③分别向1～5号试管中加入0．5％过氧化氢酶液1mL，然后进行37℃恒温水浴。 ④反应过程中，察看每一个试管释放氧气的速度，记录结果。 3、但高于或低于最适PH时将出现不同程度的减慢 说明酶有哪些用途有一个最适PH值。 4、叶绿体中色素的提取和离别 实验原理： 叶绿体中的色素都能溶解于有机溶剂中，如：丙酮（无水乙醇）等。所以可以用丙酮提取叶绿体中的色素。 材料用具： 新鲜的绿色叶片（如菠菜叶片）；干燥的定性滤纸，烧杯（100mL），研钵，小玻璃漏斗，棉纶布，毛细吸管，剪刀，小试管，培养皿盖，药勺，量筒（10mL），天平；丙酮，层析液，二氧化硅，碳酸钙。 办法步骤： 1、取绿色叶片中的色素：称量、剪碎、研磨（加二氧化硅？碳酸钙？）、过滤 2、离别叶绿体中的色素 （1）制备滤纸条：干燥、剪角、标记线 （2）画滤液细线：细、直、干后重复２－３次 （3）离别色素：滤液细线不可以没入层析液 注意：不可以让滤液细线触到层析液。用培养皿盖盖上烧杯。 5、探究酵母菌的呼吸方法 1、实验原理： 酵母菌是单细胞真菌，在有氧和无氧的条件下都能存活，是间性厌氧菌 用具： 锥形瓶、葡萄糖、橡皮球、NaOH、石灰水 2、步骤： 1) 酵母菌培养液的配置(活化？) 2) 测试co2的产生（用何物质？） 3) 测试酒精的产生（用何物质？） 4) 实验结果的剖析（依据是？） 酵母菌是兼性厌氧菌（怎么样设置有氧和无氧的条件？） 6、察看植物细胞的有丝分裂 1、实验原理： 有丝分裂是真核生物进行细胞分裂的主要方法。依据每个时期细胞内染色体（或染色质）的变化状况，辨别该细胞处于有丝分裂的什么时期。细胞核内的染色质（染色体）容易被碱性染料（如龙胆紫溶液）染成深色 2、材料用具洋葱（可以用蒜、葱、蚕豆代替） 显微镜，载玻片，盖玻片，玻璃皿，剪刀，镊子。氯化氢的水平分数为15%的盐酸，酒精的体积分数为95%的溶液，龙胆紫（的水平分数为0.01g/mL的或0.02g/mL的溶液（或醋酸洋红液）。 3、步骤 a解离：剪取根尖23mm（最好在天天的1014点取根，因此时间是洋葱根尖有丝分裂高峰期），立即放入盛有水平分数为15%的氯化氢溶液和体积分数为95%的酒精溶液的混合液（1：
1）的玻璃皿中，在室温下解离35min。 b漂洗：待根尖酥软后，用镊子取出，放入盛有清水的玻璃皿中漂洗约10min。 c染色：把洋葱根尖放进盛有水平浓度为0.01g/mL或0.02g/mL的龙胆紫溶液（或醋酸洋红液）的培养皿中，染色35min。 d制片：取一干净载玻片，在中央滴一滴清水，将染色的根尖用镊子取出，放入载玻片的水滴中，并且用镊子尖把根尖弄碎，盖上盖玻片，在盖玻片再加一载玻片。然后，用拇指轻轻地压载玻片。拿下后加上的载玻片，既制成装片。 4洋葱根尖有丝分裂的察看 ①、低倍镜察看把制成的洋葱根尖装片先放在低倍镜下察看，需要找到分生区的细胞，它的特征是：细胞呈正方形，排列紧密，有些细胞正处于分裂状况。 ②、高倍镜察看找到分生区的细胞后，把低倍镜移走，直接换上高倍镜，用细准焦螺旋和反光镜把视线调整的既明确又较亮，直到看清细胞物象为止。注意观察，找到处于有丝分裂的前期、中期、后期、末期和间期的细胞。
